AVALIAÇÃO DE FORÇA E RESISTÊNCIA MUSCULAR DE CAMUNDONGOS APÓS PROTOCOLO DE ATROFIA POR DESUSO
Parole chiave:
Murino, Funcionalidade, Bípede, QuadrúpedeAbstract
Redução na massa e na função muscular resultantes da inatividade por períodos prolongados caracterizam a atrofia por desuso. Devido à proximidade anatômica e fisiológica entre camundongos e seres humanos, estudos experimentais com esse modelo animal têm sido realizados para compreender a atrofia por desuso. Entretanto, há especificidades funcionais entre as duas espécies, dada às marchas quadrúpede e bípede. Desse modo, o objetivo deste estudo foi avaliar a capacidade física de camundongos após protocolo de atrofia por desuso por imobilização de membros posteriores. 12 camundongos albino suíços foram divididos em 2 grupos: controle e atrofia. Após 14 dias de imobilização, foram propostos 2 métodos avaliativos: capacidade máxima de carregamento voluntária (CMCV) e nado forçado, além de avaliação da massa corporal. Não houve diferença significativa entre o peso corporal e CMCV, enquanto o tempo de nado do grupo controle foi 10 vezes maior em relação ao grupo atrofia (p<0,05). Desta forma, conclui-se que músculos esqueléticos de camundongos após desuso apresentam redução da capacidade máxima ao esforço, no entanto alguns métodos avaliativos são mais sensíveis para detectar mudanças.
Riferimenti bibliografici
BODINE, S.C. Disuse-induced muscle wasting. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, v.45, n.10, p.2200-2208, 2013.
CARON, A.Z.; DROUIN, G.; DESROSIERS, J.; TRENSZ, F.; GRENIER, G. A novel hindlimb immobilization procedure for studying skeletal muscle atrophy and recovery in mouse. Journal of Applied Physiology (1985), v.106, n.6, p.2049-2059, 2009.
CHARLES, J.P.; CAPPELLARI, O.; SPENCE, A.J.; HUTCHINSON, J.R.; WELLS, D.J. Musculoskeletal Geometry, Muscle Architecture and Functional Specialisations of the Mouse Hindlimb. Plos ONE, v.11, n.4, p.1-21, 2016.
CICILIOT, S.; ROSSI, A.C.; DYAR, K.A.; BLAAUW, B.; SCHIAFFINO, S. Muscle type and fiber type specificity in muscle wasting. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, v.45, n.10, p.2191-2199, 2013.
COUTINHO, E.L.; GOMES, A.R.S.; FRANÇA, C.N.; SALVINI, T.F. A new model for the immobilization of the rat hind limb. Brazilian Journal of Medical and Biological Research, v.35, p.1329-1332, 2002.
FRIMEL, T.N.; KAPADIA, F.; GAIDOSH, G.S.; LI, Y.; WALTER, G.A.; VANDENBORNE, K. A model of muscle atrophy using cast immobilization in mice. Muscle & Nerve, v.32, p.672-674, 2005.
GAO, Y.; ARFAT, Y.; WANG, H.; GOSWAMI, N. Muscle Atrophy Induced by Mechanical Unloading: Mechanisms and Potential Countermeasures. Frontiers in Physiology, v.20, n.9, p.235-243, 2018.
JUNG, S.; KIM, S.H.; JEUNG, W.; RA, J.; HEO, K.; SHIM, J.J.; LEE, J.L. Fermented antler improves endurance during exercise performance by increasing mitochondrial biogenesis and muscle strength in mice. Applied Sciences, v.11, n.12, p.5386-, 2021.
KILKENNY, C.; BROWNE, W.; CUTHILL, I.C.; EMERSON, M.; ALTMAN, D.G. NC3Rs Reporting Guidelines Working Group. Animal research: reporting in vivo experiments: the ARRIVE guidelines. British Journal of Pharmacology, v.160, n.7, p.1577-1579, 2010.
KRAWIEC, B.J.; FROST, R.A.; VARY, T.C.; JEFFERSON, L.S.; LANG, C.H. Hindlimb casting decreases muscle mass in part by proteasome-dependent proteolysis but independent of protein synthesis. American Journal of Endrocrinology and Metabolism, v.289, n.6, p.969-980, 2005.
LIEBER, R.L.; WARD, S.R. Skeletal muscle design to meet functional demands. Philosophical Transactions of The Royal Society, v.366, n.1570, p.1466-1476, 2011.
MATHEWSON, M.A.; CHAPMAN, M.A.; HENTZEN, E.R.; FRIDÉN, J.; LIEBER, R.L. Anatomical, architectural, and biochemical diversity of the murine forelimb muscles. Journal of Anatomy, v.221, n.5, p.443-451, 2012.
MINUZZI, L.G.; KUGA, G.K.; BREDA, L.; GASPAR, R.C.; MUÑOZ, V.R.; PEREIRA, R.M.; BOTEZELLI, J.D.; SILVA, A.S.R.; CINTRA, D.E.; MOURA, L.P.; ROPELLE, E.R.; Pauli, J.R. Short-term resistance training increases APPL1 content in the liver and the insulin sensitivity of mice fed a long-term high-fat diet. Experimental and Clinical Endocrinology & Diabetes, v.128, n.01, p.30-37, 2019.
ONDA, A.; KONO, H.; JIAO, Q.; AKIMOTO, T.; MIYAMOTO, T.; SAWADA, Y.; SUZUKI, K.; KUSAKARI, Y.; MINAMISAWA, S.; FUKUBAYASHI, T. New mouse model of skeletal muscle atrophy using spiral wire immobilization. Muscle & Nerve, v.54, n.4, p.788-791, 2016.
SANTOS JÚNIOR, F.F.U.; SOUZA, K.C.L.; SERRA, D.S.; CECCATTO, V.M.; CAVALCANTE, F.S.A. Analysis of pulmonary function and micromechanics structure after 14 days of movement restriction in female rats. Fisioterapia e Pesquisa, v.24, n.2, p.205-210, 2017.
WANG, Y.; PESSIN, J.E. Mechanisms for fiber-type specificity of skeletal muscle atrophy. Current Opinion in Clinical Nutrition and Metabolic Care, v.16, n.3, p.243-250, 2013.