Enterobacteria isolated in Didelphis albiventris from the municipality of Bom Jesus – Piauí
Keywords:
Wild animals, microbiology, antimicrobial resistanceAbstract
The Enterobacteriaceae family is represented by more than 260 species and subspecies of bacteria that make up
the intestinal microbiota of several animal species, and may present pathogenic characteristics for them and
humans when in contact with susceptible organisms. In this sense, this study aimed to isolate and describe the
presence of enterobacteria in the intestinal microbiota of D. albivenntris, a marsupial mammal of anthropic
character, which has an important ecological role including participation in the endozoochory process. Biological
samples were collected from the anal mucosa of nine animals using sterile swabs. The samples were cultured on
Blood, Levine, Brilliant Green, and Salmonella Shiguella Agars, and incubated for 24h. Forty-seven colonies were
evidenced and analyzed morphotintorially by means of Gram staining, all in the form of Gram-negative rods. A
total of 23 out of 47 (51%) isolates were identified as Klebsiella aerogenes, 10/47 (21%) as Klebsiella pneumoniae,
4/47 (8%) as Proteus vulgaris, 3/47 (6%) as Escherichia coli, 3/47 (6%) as Proteus mirabilis, 2/47 (4%) as
Klebsiella cloacae, and 2/47 (4%) belonged to the Salmonella genus. The samples were also submitted to the
sensitivity test against antimicrobials with the disk-diffusion method in Mueller-Hinton Agar and disks soaked with
antibiotics, presenting different resistances. Salmonella spp. exhibited 100% resistance to ofloxacin, Escherichia
coli showed 100% resistance to doxycycline and rifampicin, Klebsiella aerogenes showed 95.6% resistance to
rifampicin and 86.9% to cefixime and sulfonamides, Proteus spp. showed 71.4% resistance to tetracycline and
doxycycline, and Klebsiella pneumoniae exhibited 60% resistance to tetracycline and rifampicin.
References
ALVES, T.S.; SIQUEIRA, A.K.; FERRAZ, M.M.G.; LEITE, D.S. Identificação e perfil de sensibilidade de Enterobacter spp. isolados de leite bovino cru. Veterinária e Zootecnia, v.22, n.1, p.114–122, 2022.
ARBEX, M.A.; VARELLA, M.C.L.; SIQUEIRA, H.R.; MELLO, F.A.F. Drogas antituberculose: interações medicamentosas, efeitos adversos e utilização em situações epeciais.Parte 2: fármacos de Segunda linha. Jornal Brasileiro e Pneumologia, v.36, n.5, p.641-656, 2010.
ARMBRUSTER, C.E.; MOBLEY, H.L.T.; PEARSON, M.M. Pathogenesis of Proteus mirabilis Infection. Ecosal Plus, v.8, n.1, 2018.
BROOKS, G.F.; CARROLL, K.C.; BUTEL, J.S.; MORSE, S.A.; MIETZNER. Microbiologia Médica de Jawetz, Melnick e Adelberg. 26. ed., AMGH editora, 2014.
CLSI. Clinical and Laboratory Standards Institute. Diagnóstico Microbiológico Especializado – Antibiograma, interpretação das zonas de inibição e concentração inibitória mínima. p.2-11, 2022.
DIAS, P.A.; MORAES, T.P.; WILSMANN, D.E.; FERRASSO, M.M.; MARINHEIRO, M.F.; HEINEN, J.G.; CALABUIG, C.I.P.; TIMM, C.D. Ocorrência de|Campylobactere Enterobacteriaceae em aves silvestres e frangos de corte. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v.71, n.1, p.225-231, 2019.
DRUMOND, S.N.; SANTIAGO, A.F.; MOREIRA, M.; LANNA, M.C.S.; ROESER, H.M.P. Identificação molecular de Escherichia coli diarreiogênica na bacia hidrográfica do Rio Xopotó na região do Alto Rio Doce. Engenharia Sanitária e Ambiental, v.23, n.3, p.579-590, 2018.
DRZEWIECKA, Dominika. Significado e funções de Proteus spp. Bactérias em Ambientes Naturais. Microbial Ecology, v.72, n.4, 741-758, 2016.
GIRÃO, R.M.F.; SOARES, L.P.; QUEIROZ, C.P. Avaliação do uso de amicacina para tratamento de estomatite, causada por proteus sp., em jiboia. Ciência Animal, v.28, n.3, p.16-18, 2018.
HAMILTON, A.L.; KAMM, M.A.; SIEW, C.N.G.; MORISSON, M. Proteus spp. as Putative Gastrointestinal Pathogens. Clinical Microbiolgy, v.31, n.3, 2018.
IBGE. Instituto Brasileiro de Geografia e Estatistica, 2022. https://cidades.ibge.gov.br/brasil/pi/ bom-jesus/panorama. Acesso em: 2 de novembro de 2024.
LEVINSON, W. Bacilos gram-negativos relacionados ao trato intestinal: salmonella. In: LEVINSON, W. Microbiologia médica e imunologia. 10. ed., Porto Alegre: Amgh, 2011. p.140-157
LIMA, D.C.V.; SIQUEIRA, D.B.; MOTA, R.A.; RAMEH-DE-ALBUQUERQUE, L.C.; SOUZA, D.S.; SANTOS, A.S.; SILVA, L.B.G. Microbiologia de swabs retais e otológicos em carnívoros silvestres do zoológico do Parque Estadual Dois Irmãos, Pernambuco. Pesquisa Veterinária Brasileira, v.32, n.2, p.159-164, 2012.
LOPES, E.S.; MACIEL, W.C.; TEIXEIRA, R.S.C.; ALBUQUERQUE, Á.H., VASCONCELOS, R.H.; MACHADO, D.N.; BEZERRA, W.G.A.; SANTOS, I.C.L. Isolamento de salmonella spp. e Escherichia coli de psitaciformes: relevância em saúde pública. Arquivos do Instituto Biológico, v.83, p.1–10, 2016.
MCVEY, D.S.; KENNEDY, M.; CHENGAPPA, M.M. Microbilogia Veterinária. 3.ed., Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2016. Muller, G.; BRUM, J.G.W.; LANGONE, P.Q.; MICHELS, G.H.; SINKOC, A.L.; RUAS, J.L.; BERNE, M.E.A. Didelphis albiventris Lund, 1841, parasitado por Ixodes Loricatus Neumann, 1899, e Amblyomma Aureolatum (PALLAS, 1772) (ACARI: IXODIDAE) no Rio Granden do Sul. Arquivos do Instituto Biológico, v.72, n.3, p.319-324, 2005.
OLIVEIRA, A.K.M.; LEME, T.F. Didelphis albiventris como indutor de germinação de Rapanea ferrugínea (Myrcinaceae) em área de Cerrado, Mato Grosso do Sul, Brasil. Iheringia, Série zoologia, v.103, n.4, p.361-366, 2013.
PEREIRA, A.A.; NORA, G.D. Reflexões sobre o tráfico de animais silvestres no estado de Mato Grosso, Brasil. Biodiversidade, v.20, n.2, p.105-124, 2021. PINHEIRO, E.A.; ROBERTO, J.C.A.; SOUTO, S.P.; LIMA, S.C. Impactos Ambientais na Fauna Silvestre Causado Pelo Crescimento Urbano da Cidade de Manaus/AM. Revista de Gestão e Secretariado, v.14, n.5. p.8622–8634, 2023.
ROBERTS, M.C. Update on acquired tetracycline resistance genes. FEMS Microbiology Letters, v.245, n.2, p.195–203, 2005.
ROCHA, D.C.C.; MARINHO, A.N.R.; SANTOS, S.D.; LOUREIRO, E.C.B. Caracterização molecular de Escherichia coli enteropatogênica atípica em animais silvestres capturados na Região Amazônica. Revista Pan-Amazônica de Saúde, v.8, n.1, p.9–16, 2017.
SOUSA, A.T.H.I.; MAKINO, H.; BRUNO, V.C.M.; CÂNDIDO, S.L.; NOGUEIRA, B.S.; MENEZES, I.G.; NAKAZATO, L; DUTRA, V. Perfil de resistência antimicrobiana de Klebsiella pneumoniae isoladas de animais domésticos e silvestres. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v.71, n.2, p.584-593, 2019.
SOUSA, A.B.A.; RAMALHO, F.L.; CAMARGO, B. Prevalência de infecções nosocomiais ocasionadas por Klebsiella pneumoniae produtora de carbapenemase (KPC) em indivíduos hospitalizados. Brazilian Journal of Health Review, v.3, n.2, p. 1915 -1932, 2020.
SPINOSA, H.S.; GÓRNIAK, S.L.; BERNARDI, M.M. Farmacologia aplicada à medicina Veterinária. 6.ed., Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2017.
TORTORA, G.J.; FUNKE, B.R.; CASE, C.L. Microbiologia. 8.ed., Porto Alegre: Artmed, 2005.
