PRODUÇÃO DE EMBRIÕES PARTENOGENÉTICOS DE CUTIAS USANDO CLORETO DE ESTRÔNCIO E CITOCALASINA B
Schlagworte:
Ativação artificial, Produção in vitro de embrião, Roedor selvagemAbstract
O estudo teve como objetivo avaliar o efeito do cloreto de estrôncio (SrCl2) com citocalasina B (CB) na ativação de oócitos agouti maturados in vitro para produção de embriões. Assim, os ovários foram utilizados para a recuperação de ovócitos por fatiamento. Posteriormente, os ovócitos viáveis foram destinados à maturação in vitro (MIV) e após 24 h avaliados quanto à expansão e viabilidade das células do cumulus e presença do primeiro corpúsculo polar (1PB). Após IVM, os oócitos foram ativados com uma combinação de 10 mM SrCl2 e 5 μg/mL CB por 6 h e avaliados quanto à cinética de desenvolvimento embrionário. Assim, observou-se 93,3% de expansão das células do cumulus, com 91,2% de viabilidade e 37,3% de oócitos com a presença de 1PB. Em relação ao desenvolvimento embrionário, foram observadas 43,2% (19/44) de estruturas clivadas e 6,8% (3/44) de mórulas em relação ao número de oócitos e 18,8% (3/16) de mórulas em relação ao número de estruturas clivadas . Assim, a combinação de SrCl2 com CB promoveu a ativação de oócitos maturados in vitro de cutia resultando em mórulas. Finalmente, com este estudo foram desenvolvidos passos fundamentais para a conservação in vitro através de biotécnicas reprodutivas em cutias.
Literaturhinweise
AZUMA, R.; MIYAMOTO, K.; OIKAWA, M.; YAMADA, M.; ANZAI, M. Combinational treatment of trichostatin A and vitamin c improves the efficiency of cloning mice by somatic cell nuclear transfer. Journal of Visualized Experiments, v.134, p.e57036, 2018.
BARROS, F.F.P.D.C.; TEIXEIRA, P.P.M.; PADILHA‐NAKAGHI, L.C.; USCATEGUI, R.A.R.; LIMA, M.R.; SANTOS, V.J.C.; ROSSY, K.C.; BORGES, L.P.B.; MACHADO, M.R.F.; VICENTE, W.R.R. Ovum pick‐up and in vitro maturation in spotted paca (Cuniculus paca, Linnaeus, 1766). Reproduction in Domestic Animals, v.55, p.442–447, 2020.
EMMONS, L.; REID, F. Dasyprocta leporina. The IUCN Red List of Threatened Species, 2016.
FERRAZ, M.S.; CARVALHO, M.A.M.; MORAES, J.; FEITOSA, M.L.T.; BERTOLINI, M.; ALMEIDA, H.M.; BEZERRA, P.G.T.; PIRES, L.C.; ALBUQUERQUE, D.M.N. In vitro maturation of agoutis (Dasyprocta prymnolopha) oocytes followed by in vitro fertilization and parthenogenetic activation. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v.72, p.443–451, 2020.
FERRAZ, M.S.; JÚNIOR, M.F.J.; FEITOSA, M.L.T.; ALMEIDA, H.M.; BEZERRA, D.O.; PESSOA, G.T.; ALBUQUERQUE, D.M.N.; CARVALHO, M.A.M. Técnica de fatiamento do ovário para obtenção de oócitos em cutias (Dasyprocta Prymnolopha). Pesquisa Veterinária Brasileira, v.36, p.204–208, 2016.
IDRIS, S.K.; ABDULLAH, R.B.; EMBONG, W.K.; RAHMAN, M.M. Comparison between different combinations of chemical treatment on parthenogenetic activation of mouse oocytes and its subsequent embryonic development. Animal Cells and Systems, v.17, p.196–202, 2013.
LIN, Y.H.; HWANG, J.L.; SEOW, K.M.; HUANG, L.W.; HSIEH, B.C.; CHEN, H.J.; TZENG, C.R.; BAI, C.H. Effect of incubation with different concentrations and durations of FSH for in-vitro maturation of murine oocytes. Reproductive Biomedicine, v.23, p.111–117, 2011.
MA, S.F.; LIU, X.Y.; MIAO, D.Q.; HAN, Z.B.; ZHANG, X.; MIAO, Y.L.; YANAGIMACHI, R.; TAN, J.H. Parthenogenetic activation of mouse oocytes by strontium chloride: a search for the best conditions. Theriogenology, v.64, p.1142–1157, 2005.
ZHU, X.L.; LI, S.F.; ZHANG, X.Q.; XU, H.; LUO, Y.Q.; YI, Y.H.; LI-JUAN, L.V.; ZHANG, C.H.; WANG, Z.B.; OUYANG, Y.C.; SCHATTEN, H.; HOU, Y. Synaptotagmin 1 regulates cortical granule exocytosis during mouse oocyte activation. Zygote, v.28, p.97–102, 2019.
