v. 30 n. 4 (2020): Revista Ciência Animal
Artigos Originais

CRYOPRESERVATION OF Trichomonas gallinae TROPHOZOITES

pdf (English)
  • Bruna BACCEGA,
  • Yan Wahast ISLABÃO,
  • Alexia Brauner de MELLO,
  • Filipe Obelar MARTINS,
  • Nara Amélia da Rosa FARIAS,
  • Camila Belmonte OLIVEIRA
Bruna BACCEGA
Dpto de Microbiologia e Parasitologia da Universidade Federal de Pelotas (UFPel)
Yan Wahast ISLABÃO
Instituto de Biologia na Universidade Federal de Pelotas (UFPel)
Alexia Brauner de MELLO
Instituto de Biologia na Universidade Federal de Pelotas (UFPel)
Filipe Obelar MARTINS
Instituto de Biologia na Universidade Federal de Pelotas (UFPel)
Nara Amélia da Rosa FARIAS
Dpto de Microbiologia e Parasitologia da Universidade Federal de Pelotas (UFPel)
Camila Belmonte OLIVEIRA
Dpto de Microbiologia e Parasitologia da Universidade Federal de Pelotas (UFPel)

Publicado 2022-12-09

Palavras-chave

  • Tricomoníase,
  • Crioprotetores,
  • Freezer,
  • Ultrafreezer,
  • Nitrogênio

Como Citar

BACCEGA, B. .; ISLABÃO, Y. W. .; MELLO, A. B. de .; MARTINS, F. O. .; FARIAS, N. A. da R. .; OLIVEIRA, C. B. . CRYOPRESERVATION OF Trichomonas gallinae TROPHOZOITES. Ciência Animal, [S. l.], v. 30, n. 4, p. 10–19, 2022. Disponível em: https://revistas.uece.br/index.php/cienciaanimal/article/view/9748. Acesso em: 9 jan. 2026.
Creative Commons License
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Resumo

Este estudo teve como objetivo avaliar a viabilidade de isolados de T. gallinae com o uso de crioprotetores - DMSO, etileno glicol (EG), glicerol (GL) e propileno glicol (PG) em freezer, nitrogênio e ultrafreezer, por 120 dias. Criopreservação com GL, o processo de congelamento só foi viável em um ultrafreezer (20%). O uso de DMSO levou a trofozoítos viáveis (40%) quando o congelamento ocorreu em um ultrafreezer e em nitrogênio. O congelamento foi viável quando ambos os crioprotetores, EG (90%) e PG (80%), foram utilizados em um ultrafreezer e em nitrogênio.

pdf (English)

Downloads

Não há dados estatísticos.

Referências

  1. ABREU, M.M.V.; TUTUNJI, V.L. Implantação e manutenção da coleção de culturas de micro-organismos do UniCEUB. Universitas: Ciências da Saúde, v.2, n.2, p. 236-25, 2004.
  2. BUNBURY, N.; JONES, C.G.; GREENWOOD, A.G.; BELL, D.J. Trichomonas gallinae in Mauritian Columbids: Implications for an endangered endemic. Journal of Wildlife Diseases, v.43, n.3, p.399-407, 2007.
  3. CALLOW, L.L.; FARRANT, J. Cryopreservation of the promastigote form of Leishmania tropica var. major at different cooling rates. International Journal of Parasitology, v.3, n.1, p.77–88, 1973.
  4. CAMPERO, C.M. Use of DMSO for the cryopreservation of Trichomonas foetus in liquid nitrogen. Veterinary Parasitology, v.31, n.3-4, p.339-343, 1989.
  5. CASTRO, S.V.; CARVALHO, A.A.; SILVA, C.M.G. FAUSTINO, L.R.; FIGUEIREDO, J.R.; RODRIGUES, A.P.R. Agentes crioprotetores intracelulares: características e utilização na criopreservação de tecido ovariano e oocitos. Acta Scientiae Veterinariae, v.39, n.2, p.1-17, 2011
  6. COSTA, C.P.; FERREIRA, M.C. Preservação de microrganismos: revisão. Revista de Microbiologia, v.22, p.263-268, 1991.
  7. DEL VALLE, A. Human oocyte and ovarian tissue cryopreservation and its application. Journal of Assisted Reproduction and Genetics, v.25, n.7, p.287-296, 2008.
  8. DIAMOND, L.S. The establishment of various trichomonads of animals and man in axenic cultures. Journal of Parasitology, v.43, n.4, p.488-499, 1957.
  9. DUMAS, N. Conservation aux basses tempeeratures de Toxoplasma gondii Nicolle et Manceaux, 1909: action du dimeethyl-sulfoxyde. Annales de Parasitologie Humaine et Comparée, v.49, n.3, p.1-40, 1974.
  10. FERREIRA, A.V.L.; SOUSA, M.L.N.M.; SOARES FILHO, A.A.; SAMPAIO, C.M.S. Resfriamento e criopreservação em invertebrados aquáticos: aspectos relevantes. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v.39, n.3, p.335-340, 2015.
  11. FORRESTER, D.J.; FOSTER, G.W. Trichomonosis. In: Atkinson, C.T., Thomas, N.J., Hunter, D.B. (Eds.), Parasitic Diseases of Wild Birds. Oxford, UK: Wiley-Blackwell, p.120-153, 2009.
  12. FULLER, B.; PAYNTER, S. Fundamentals of cryobiology in reproductive medicine. Reproductive BioMedicine Online, v.9, n.6, p.680-869, 2004.
  13. GIRÃO, M.D.; PRADO, M.R.; BRILHANTE, R.S.N.; CORDEIRO, R.A.; MONTEIRO, A.J.; SIDRIM, J.J.C.; ROCHA, M.F.G. Viabilidade de cepas de Malassezia pachydermatis mantidas em diferentes métodos de conservação. Revista Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, v.37, n.3, p.229-233, 2004.
  14. GONÇALVES, P.B.D.; FIGUEIREDO, J.R.; FREITAS, V.J.F. Biotécnicas Aplicadas à Reprodução Animal. 1ª ed., Roca: São Paulo, 2008. 628p.
  15. HENTRICH, B.; BOSE, R. Cryopreservation of Babesia divergens from jirds as a live vaccine for cattle. International of Journal of Parasitology, v.23, n.6, p.771-776, 1993.
  16. HUBÁLEK, Z. Protectants used in the cryopreservation of microorganisms. Cryobiology, v.46, n.3, p.205-229, 2003.
  17. JAIN, K.J.; PAULSON, R.J. Oocite cryopreservation. Fertility and Sterility, v.86, n.4, p.1037-1046, 2006.
  18. LAW, P.; MERYMAN, H. Cryopreservation of human bone marrow grafts. In Gee A: Bone marrow processing and purging. (Eds.) A practical guide, Flórida, CRCPress, p.332-40, 1991.
  19. LEVINE, N.D.; ANDERSEN, F.L.; LOSCH, M.B.; NOTZOLD, R.A.; MEHRA, K.N. Survival of Tritrichomonas foetus stored at -28 and -95 oC degrees after freezing in the presence of glycerol. Journal of Protozoology, v.9, n.1, p.347-350, 1962.
  20. LEVINE, N.D.; MARQUARDT, W.C. The effect of glycerol and related compounds on survival of Tritrichomonas foetus at freezing temperatures. Journal of Protozoology, v.2, n.3, p.100-107, 1955
  21. LUMSDEN, W.H.R.; ROBERTSON, D.H.H.; MCNEILLAGE, G.J.C. Isolation, cultivation, low temperature preservation and infectivity titration of Trichomonas vaginalis. The British Journal of Venereal Diseases, v.42, n.3, p.145-154, 1966
  22. MATSUO, J. A simple and rapid method for cryopreservation of Trichomonas vaginalis. Parasitology Research, v.101, n.4, p.907-911, 2007.
  23. MAZUR, P. Freezing of living cells: mechanisms and implications. American Journal of Physiology, v.247, p.125-142, 1984.
  24. MC ENTEGART, M.G. The maintenance of stock strains of trichomonads by freezing. The Journal of Hygiene, v.52, n.4, p.545–550, 1954.
  25. NEWTON, H.; FISHER, J.; ARNOLD, J.R.P.; PEGG, D.E.; FADDY, M.J.; GOSDEN, R.G. Permeation of human ovarian tissue with cryoprotective agents in preparation for cryopreservation. Human Reproduction, v.13, n.2, p.376-380, 1998.
  26. OLIVEIRA, C.H.; VASCONCELOS, F.A.; SOUZA, A.O.; MARTINS-FILHO, M.X.; SILVA, F.C.; VARAGO, M.A.; LAGARES, M.A. Cholesterol addition protects membrane intactness during cryopreservation of stallion sperm. Animal Reproduction Science, v.118, n.2-4, p.194-200, 2010.
  27. RALL, W.F.; REID, D.S.; POLGE, C. Analysis of slow-warming injury of mouse embryos by cryomicroscopical and physiochemical methods. Cryobiology, v.21, n.1, p.106-121, 1984.
  28. RÔLO, J.L.P.; PAULINI, F.; SILVA, R.C.; ARAÚJO, M.S.; MARINHO, A.P.S.; LUCI, C.M. Cryopreservation and characterization of canine preantral follicles. Cryobiology, v.81, p.34-42, 2018.
  29. SNOECK, P.P.N.; HENRY, M.; MELO, M.I.V. Efeito de diferentes diluidores sobre a viabilidade espermática pós-descongelação de sêmen equino. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v.59, n.1, p.56-64, 2007.
  30. STANDER-BREEDT, H.; SCHWALBACH, L.M.J.; GEYLING, J.P.C.; LOSKUTOFF, N.M. Effect of different cryodiluents and thawing methods on the post-thaw motility of African lion (Panthera leo) spermatozoa. South African Journal of Animal Science, v.34, p.74-76, 2004.
  31. STEDMAN, T.L. Stedman: dicionário médico. 1a ed., Guanabara Koogan, Rio de Janeiro, 2003, 2196p.
  32. THIRUMALA, S.; CAMPBELL, W.T.; VICKNAIR, M.R.; TIERSCH, T.R.; DEVIREDDY, R.V. Freezing response and optimal cooling rates for cryopreserving sperm cells of striped bass, Morone saxatilis. Theriogenology, v.66, n.4, p.964-973, 2006.
  33. TORTORA, G.J.; FUNKE, B.R.; CASE, C.L. Microbiologia. (Eds.). 12a ed., Artmed, Porto Alegre: 2012. 964p.
  34. UGA, S.; MATSUMURA, T. Studies on the cryopreservation of, effects of cryoprotective agent and "seeding" of ice, Jpn. Journal of Parasitology, v.28, n.1, p 421–426, 1979.
  35. WEATHERSBY, A.B.; MCCALL, J.W. Cryopreservation of Plasmodium gallinaceum Brumpt sporozoites for 16 years at -196 ºC. Cryobiology, v.18, n.3, p.313–314, 1981.
  36. YUAN, Y.Q.; XUE, C.G. Cryopreservation of Trichomonas vaginalis and its influence factors. Chinese Journal of Parasitology & Parasitic Diseases, v.28, n.5, p.395-396, 2010.

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)