BIOTECNOLOGIAS NA PRESERVAÇÃO DE ESPERMATOZOIDES FELINOS

Autores

  • Maria Isabel Mello MARTINS Laboratório de Andrologia e Reprodução Animal Assistida da Universidade Estadual de Londrina
  • Ana Beatriz Marques de ALMEIDA Laboratório de Andrologia e Reprodução Animal Assistida da Universidade Estadual de Londrina
  • Myrian Megumy Tsunokawa HIDALGO Laboratório de Andrologia e Reprodução Animal Assistida da Universidade Estadual de Londrina

Palavras-chave:

Sistema CASA, Gatos, Biotecnologia do sêmen, Subpopulações espermáticas

Resumo

O gato doméstico é a única espécie da família Felídea sem risco ou iminência de extinção, diferente da maior parte dos felinos selvagens. O desenvolvimento e aprimoramento de diferentes biotécnicas reprodutivas, é essencial para a manutenção da qualidade reprodutiva, tendo em vista a preservação de espécies mais vulneráveis. Além disso, as biotécnicas do sêmen são para as tecnologias reprodutivas, como a inseminação artificial (IA) e a fertilização in vitro (FIV). Sendo assim, o objetivo deste compilado bibliográfico foi abordar as principais técnicas de colheita, análise e preservação de sêmen/espermatozoides felino, assim como o uso dessas células em IA e FIV. Para a colheita do sêmen felino, diferentes métodos têm sido aplicados: ejaculação farmacológica, eletroejaculação e vagina artificial. Em caso de óbito do reprodutor, os espermatozoides recuperados do epidídimo também apresentam viabilidade reprodutiva. Ademais, a cinética espermática avaliada pelo sistema CASA, a morfologia e a morfometria são as principais análises que demonstram a qualidade espermática e refletem na fertilidade do ejaculado. O sistema CASA também avalia a trajetória individual de cada espermatozoide, que ao se agrupar em clusters, demonstra a heterogeneidade do ejaculado nas subpopulações. Contudo, os diluentes para a conservação e refrigeração dos espermatozoides felinos e as curvas de congelação ainda não estão totalmente estabelecidos e influenciam diretamente a viabilidade dos espermatozoides criopreservados. Diante disso, os resultados da utilização do sêmen felino após criopreservação são inconsistentes, sendo necessários mais estudos para elucidar melhores curvas de congelação e meios de diluentes para viabilizar a preservação do material genético dos gatos.

Referências

ACKERMANN, C.L.; SOUZA, N.R.; TREVISOL, E.; VOLPATO, E.; LOPES, M.D. Avaliação da associação de tiletamina, zolazepam, tramadol e isoflurano na coleta de sêmen de gatos domésticos por eletro-ejaculação. In: XX Congresso Brasileiro de Reprodução Animal, Anais, p.91, 2013.

AITKEN, R.J. Reactive oxygen species as mediators of sperm capacitation and pathological damage. Molecular Reproduction and Development, v.84, n.10, p.1039–1052, 2017.

AMANN, R.P.; WABERSKI, D. Computer-assisted sperm analysis (CASA): Capabilities and potential developments. Theriogenology, v.81, n.1, p.5-17, 2014.

AMIDI, F.; PAZHOHAN, A.; SHABANI NASHTAEI, M.; KHODARAHMIAN, M.; NEKOONAM, S. The role of antioxidants in sperm freezing: a review. Cell and Tissue Banking, v.17, n.4, p.745–756, 2016.

ANGRIMANI, D.S.R.; LÚCIO, C.F.; VEIGA, G.A.L.; REGAZZI, F.M.; SILVA, L.C.G.; NICHI, M.; VANNUCCHI, C.I. Biotécnicas reprodutivas com o emprego de espermatozoides epididimários em cães. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v.37, n.4, p.323–327, 2013.

AXNÉR, E.; FORSBERG, C.L. Sperm Morphology in the Domestic Cat, and its Relation with Fertility: A Retrospective Study. Reproduction in Domestic Animals, v.42, n.3, p.282-291, 2007.

BARBAS, J.P.; LEAHY, T.; HORTA, A.E.; GARCÍA-HERREROS, M. Sperm kinematics and subpopulational responses during the cryopreservation process in caprine ejaculates. Cryobiology, v.82, n.2, p.137–147, 2018.

BARBOSA, B.S; RODRIGUES SILVA, H.V.R.; TABOSA, B.E.A; NUNES, T.G.P.; MAGALHÃES, F.F.; SILVA, L.D.M. Morphological and morphometric characterization of domestic cat epididymal sperm. Reproduction in Domestic Animals, v.54, n.12, p.1630–1636, 2019.

BARBOSA, B.S; SILVA, H.V.R.; SILVA, T.F.P.; SILVA, L.D.M. Influence of glycerol addition on the quality of cat epididymal sperm during the freeze-thaw process. Semina:Ciencias Agrárias, v.41, n.4, p.1237–1246, 2020.

BATISTA, A.M.; GUERRA, M.M.P. Novas técnicas para avaliação da qualidade do sêmen caprino. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v.34, n.3, p.125–132, 2010.

BERGSTEIN-GALAN, T.G.; WEISS, R.R.; KOZICKI, L.E.; BICUDO, S.D. Sperm subpopulations in ejaculated sperm and spermatozoa recovered from ovine epididymides up to 48 h after death. Animal Reproduction Science, v.187, n.4, p.20–27, 2017.

BRUSENTSEV, E.; KIZILOVA, E.; MOKROUSOVA, V.; KOZHEVNIKOVA, V.; ROZHKOVA, I.; AMSTISLAVSKY, S. Characteristics and fertility of domestic cat epididymal spermatozoa cryopreserved with two different freezing media. Theriogenology, v.110, n.4, p.148–152, 2018.

BUARPUNG, S.; THARASANIT, T.; THONGKITTIDILOK, C.; COMIZZOLI, P.; TECHAKUMPHU, M. Spermatozoa isolated from cat testes retain their structural integrity as well as a developmental potential after refrigeration for up to 7 days. Zygote, v.23, n.5, p.644–651, 2015.

BURANAAMNUAY, K. Protocols for sperm cryopreservation in the domestic cat: A review. Animal Reproduction Science, v.183, n.11, p.56–65, 2017.

CARDOSO, J.F.S.; PAULA, N.R.O.; UCHOA, D.C.; SILVA, L.D.M. Diferentes concentrações de gema de ovo na qualidade do sêmen canino diluído em ACP®-106 e resfriado a 4 °C. Comunicata Scientiae, v.1, n.2, p.146–152, 2010.

CHATDARONG, K. Retained fertilizing capability in cryopreserved feline spermatozoa. Reproduction in Domestic Animals, v.52, n.4, p.261–264, 2017.

CHEUQUEMÁN, C.; FAÚNDEZ, R.; SÁNCHEZ, R.; RISOPATRÓN, J. Changes in sperm function and structure after freezing in domestic cat spermatozoa. Andrologia, v.50, n.9, p.1–8, 2018.

CUNTO, M.; KUSTER, D.G.; BINI, C.; CARTOLANO, C.; PIETRA, M.; ZAMBELLI, D. Influence of Different Protocols of Urethral Catheterization after Pharmacological Induction (Ur.Ca.P.I.) on Semen Quality in the Domestic Cat. Reproduction in Domestic Animals, v.50, n.6, p.999–1002, 2015.

DE PAZ, P.; MATA-CAMPUZANO, M.; TIZADO, E.J.; ÁLVAREZ, M.; ÁLVAREZ-RODRÍGUEZ, M.; HERRAEZ, P.; ANEL, L. The relationship between ram sperm head morphometry and fertility depends on the procedures of acquisition and analysis used. Theriogenology, v.76, n.7, p.1313–1325, 2011.

FERRAZ, M.A.M.M.; MORATÓ, R.; YESTE, M.; ARCARONS, N.; PENA, A.I.; TAMARGO, C.; HIDALGO, C.O.; MUIÑO, R.; MOGAS, T. Evaluation of sperm subpopulation structure in relation to in vitro sperm-oocyte interaction of frozen-thawed semen from Holstein bulls. Theriogenology, v.81, n.8, p.1067–1072, 2014.

FLORES, E.; TABERNER, E.; RIVERA, M.M.; PEÑA, A.; RIGAU, T.; MIRÓ, J.; RODRÍGUEZ-GIL, J.E. Effects of freezing/thawing on motile sperm subpopulations of boar and donkey ejaculates. Theriogenology, v.70, n.6, p.936–945, 2008.

GALLEGO, V.; CAVALCANTE, S.S.; FUJIMOTO, R.Y.; CARNEIRO, P.C.F.; AZEVEDO, H.C.; MARIA, A.N. Fish sperm subpopulations: Changes after cryopreservation process and relationship with fertilization success in tambaqui (Colossoma macropomum). Theriogenology, v.87, n.1, p.16–24, 2017.

GUTIÉRREZ-REINOSO, M.; GARCÍA-HERREROS, M. Normozoospermic versus teratozoospermic domestic cats: Differential testicular volume, sperm morphometry, and subpopulation structure during epididymal maturation. Asian Journal of Andrology, v.18, n.6, p.871–878, 2016.

HERMANSSON, U.; AXNÉR, E. Epididymal and ejaculated cat spermatozoa are resistant to cold shock but egg yolk promotes sperm longevity during cold storage at 4 °C. Theriogenology, v.67, n.7, p.1239–1248, 2007.

HIDALGO, M.; RODRÍGUEZ, I.; DORADO, J. Influence of staining and sampling procedures on goat sperm morphometry using the Sperm Class Analyzer. Theriogenology, v.66, n.4, p.996–1003, 2006.

HIDALGO, M.M.T.; ALMEIDA, A.B.M.; MORAES, F.L.Z.; MARUBAYASHI, R.Y.P.; SOUZA, F.F.; BARREIROS, T.R.R.; MARTINS, M.I.M. Sperm subpopulations influence the pregnancy rates in cattle. Reproduction in Domestic Animals, v.56, n.8, p.1117-1127, 2021.

HOLT, W.V. Fundamental aspects of sperm cryobiology: The importance of species and individual differences. Theriogenology, v.53, n.1, p.47–58, 2000a.

HOLT, W.V. Basic aspects of frozen storage of semen. Animal Reproduction Science, v.62, n.1/3, p.3–22, 2000b.

HOLT, W.V.; LOOK, K.J.W.V. Concepts in sperm heterogeneity, sperm selection and sperm competition as biological foundations for laboratory tests of semen quality. Reproduction, v.127, n.5, p.527–535, 2004.

HOWARD, J.G.; PURSEL, V.G.; WILDT, D.E.; BUSH, M. Comparison of various extenders for freeze-preservation of semen from selected captive wild ungulates. Journal American Veterinary Medical Association, v.179, n.11, p.1157–61, 1981.

HOWARD, J.G.; BROWN, J.L.; BUSH, M.; WILDT, D.E. Teratospermic and Normospermic Domestic Cats: Ejaculate Traits, Pituitary Gonadal Hormones, and Improvement of Spermatozoal Motility and Morphology After Swim‐Up Processing. Journal of Androlology, v,11, n.3, p.204–15, 1990.

HOWARD, J.G. Semen collection and analysis in carnivores. In: FOWLER, M.E. Zoo and Wild Animal Medicine: Current Therapy. 3ª ed., Philadelphia, PA: W.B. Saunders, p.390–399,1993.

JARA, B.; MERINO, O.; SÁNCHEZ, R.; RISOPATRÓN, J. Positive effect of butylated hydroxytoluene (BHT) on the quality of cryopreserved cat spermatozoa. Cryobiology, v.89, n.4, p.76–81, 2019.

JIMÉNEZ, E.; PÉREZ-MARÍN, C.C.; VIZUETE, G.; MILLÁN, Y.; AGÜERA, E. Effect of different extenders on in vitro characteristics of feline epididymal sperm during cryopreservation. Reproduction in Domestic Animals, v.48, n.4, p.665–672, 2013.

JOHNSON, A K. Assisted Reproduction in the Male Cat. Veterinary Clinics of North America - Small Animal Practice, v.48, n.4, p.511–521, 2018.

KATHIRAVAN, P.; KALATHARAN, J.; KARTHIKEYA, G.; RENGARAJAN, K.; KADIRVEL, G. Objective Sperm Motion Analysis to Assess Dairy Bull Fertility Using Computer-Aided System - A Review. Reproduction in Domestic Animals, v.46, n.1, p.165–172, 2011.

KUMAR, A.; PRASAD, J.K.; SRIVASTAVA, N.; GHOSH, S.K. Strategies to Minimize Various Stress-Related Freeze-Thaw Damages during Conventional Cryopreservation of Mammalian Spermatozoa. Biopreservation and Biobanking, v.17, n.6, p.603–612, 2019.

KUNKITTI, P.; AXNÉR, E.; BERGQVIST, A.S.; SJUNNESSON, Y. In vitro fertilization using frozen-thawed feline epididymal spermatozoa from corpus and cauda regions. Theriogenology, v.86, n.6, p.1403–1408, 2016.

LIMA, D.V.C.; SILVA, L.D.M. Obtenção e conservação do material genético do gato doméstico macho. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v.41, n.1, p.278–282, 2017.

LUVONI, G.C.; MORSELLI, M.G. Canine epididymal spermatozoa : A hidden treasure with great potential, Reproduction in Domestic Animals, v.52, n.4, p.197–201, 2017.

MANEE-IN, S.; PARMORNSUPORNVICHIT, S.; KRAIPRAYOON, S.; THARASANIT, T.; CHANAPIWAT, P.; KAEOKET, K. L-carnitine supplemented extender improves cryopreserved-thawed cat epididymal sperm motility. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, v.27, n.6, p.791–796, 2014.

MAROTO-MORALES, A.; GARCÍA-ÁLVAREZ, O.; RAMÓN, M.; MARTÍNEZ-PASTOR, F.; FERNÁNDEZ-SANTOS, M.R.; SOLER, A.J.; GARDE, J.J. Current status and potential of morphometric sperm analysis. Asian Journal of Andrology, v.18, n.6, p.863-870, 2016.

MARTINS, M.I.M.; JUSTINO, R.C. Criopreservação espermática em felinos: estado da arte. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v.39, n.1, p.136–140, 2015.

MARTINS, M.I.M.; LEVY, X.; NULDEMAN, N.; ROUTIER, J.Y.; ELBAZ, J.M.; FONTBONNE, A. New stimulation protocol of eletroejaculation for semen collection in cheetahs. In: XIX European Veterinary Society Small Animal Reproduction Congress (EVSSAR), p.11, 2016.

MARTINS, M.I.M.; SOUZA, A.K; TRAUTWEIN, L.G.C. Subpopulações Espermáticas. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v.41, n.1, p.243–247, 2017.

MERCURI, I. Trabalho da UFMT resulta no primeiro filhote de onça-pintada do mundo nascido de inseminação artificial. Disponível em: <https://www.gcnoticias.com.br/geral/ trabalho-da-ufmt-resulta-no-primeiro-filhote-de-onca-pintada-do-mundo-nascido-de-inseminacao-artificial/67384248>. Acesso em: 02 mai 2022.

MORAIS, R.N.; MUCIOLO, R.G.; GOMES, M.L.F.; LACERDA, O.; MORAES, W.; MOREIRA, N.; GRAHAM, L.H.; SWANSON, W. F.; BROWN, J.L. Seasonal analysis of semen caracteristics, serum testosterone and fecal androgens in the ocelot (Leopardus pardalis), margay (L. weidii) and tigrina (L. tigrinus). Theriogenology, v.57, n.8, p.2027-2041, 2002.

MORATO, R.G.; MOURA, C.A.; CRAWSHAW JR., P.G. Inmobilización química de jaguares libres con una combinación de tiletamina y zolazepam. In: MEDELLIN, R.A.; CHETKIEWICZ, C.; RABINOWITZ, A.; REDFORD, K.H.; ROBINSON, J.G.; SANDERSON, E.; TABER, A. El Jaguar en el nuevo milenio. Una evaluacion de su estado, deteccion de prioridades y recomendaciones para la conservacion de los jaguares en America. Mexico. 1ª ed., Universidad Nacional Autonoma de Mexico/Wildlife Conservation Society, 2002, p.63.

MOREIRA, N. Exame andrológico e criopreservação de sêmen em felídeos selvagens. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v.41, n.1, p.312–315, 2017.

MUIÑO, R.; RIVERA, M.M.; RIGAU, T.; RODRIGUEZ-GIL, J.E.; PEÑA, A.I. Effect of different thawing rates on post-thaw sperm viability, kinematic parameters and motile sperm subpopulations structure of bull semen. Animal Reproduction Science, v.109, n.1/4, p.50–64, 2008.

MUIÑO, R.; PEÑA, A.I.; RODRÍGUEZ, A.; TAMARGO, C.; HIDALGO, C.O. Effects of cryopreservation on the motile sperm subpopulations in semen from Asturiana de los Valles bulls. Theriogenology, v.72, n.6, p.860–868, 2009.

NÚÑEZ-MARTÍNEZ, I.; MORAN, J.M.; PEÑA, F.J. A three-step statistical procedure to identify sperm kinematic subpopulations in canine ejaculates: Changes after cryopreservation. Reproduction in Domestic Animals, v.41, n.5, p.408–415, 2006.

PAZ, R.C.R.; ZUGUE, R.M.; BARNABE, V.H.; MORATO, R.G.; FELIPPE, PAN.; BARNABE, R.C. Capacidade de penetração de semen congelado de onça pintada (Panthera onca) em oócitos heterólogos. Brazilian Journal of Veterinary Research and Animal Science, v.37, n.6, p.462-466, 2000.

PAZ, R.C.R. Novas tecnologias para colheita de sêmen de felídeos domésticos e selvagens. In: IV Reunião da Associação Brasileira de Andrologia Animal (ABRAA), p.55-65, 2019.

PEÑA, A.I.; BARRIO, M.; BECERRA, J.J.; QUINTELA, L.A.; HERRADÓN, P.G. Motile sperm subpopulations in frozen-thawed dog semen: Changes after incubation in capacitating conditions and relationship with sperm survival after osmotic stress. Animal Reproduction Science, v.133, n.3/4, p.214–223, 2012.

PENFOLD, L.M.; JOST, L.; EVENSON, D.P.; WILDT, D.E. Normospermic Versus Teratospermic Domestic Cat Sperm Chromatin Integrity Evaluated by Flow Cytometry and Intracytoplasmic Sperm Injection. Biology of Reproduction, v.69, n.5, p.1730–1735, 2003.

PLATZ, C.C.; WILDT, D.E.; SEAGER, S.W.J. Pregnancy in the domestic cat after artificial insemination with previously frozen spermatozoa. Journal of Reproduction and Fertility, v.52, n.2, p.279–282, 1978.

PROCHOWSKA, S.; NIZAŃSKI, W. In vitro fertilizing potential of urethral and epididymal spermatozoa collected from domestic cats (Felis catus). Polish Journal of Veterinary Sciences, v.20, n.1, p.19–24, 2017.

PUKAZHENTHI, B.; PELICAN, K.; WILDT, D.; HOWARD, J.G. Sensitivity of domestic cat (FelisCatus) sperm from normospermic versus teratospermic donors to cold induced acrosomal damage. Biology of Reproduction, v.61, n.1, p.135-141, 1999.

QUINTERO-MORENO, A.; MIRÓ, J.; TERESA RIGAU, A.; RODRÍGUEZ-GIL, J.E. Identification of sperm subpopulations with specific motility characteristics in stallion ejaculates. Theriogenology, v.59, n.9, p.1973–1990, 2003.

RAHEJA, N.; CHOUDHARY, S.; GREWAL, S.; SHARMA, N.; KUMAR, N. A review on semen extenders and additives used in cattle and buffalo bull semen preservation. Journal of Entomology and Zoology Studies, v.6, n.3, p.239–245, 2018.

RAMÓN, M.; PÉREZ-GUZMÁN, M. D.; JIMÉNEZ-RABADÁN, P. MILAGROS, C.E.; GARCÍA-ÁLVAREZ, O.; MAROTO-MORALES, A.; ANEL-LÓPEZ, L.; SOLER, A.J.; FERNANDÉZ-SANTOS, M.R.; GARDE, J.J. Sperm cell population dynamics in ram semen during the cryopreservation process. PloSone, v.8, n.3, e59189, 2013.

SAMPAIO, B.F.B.; ZÚCCARI, C.E.S.N.; SAMPAIO, B.F.B.; ZÚCCARI, C.E.S.N. Adição de antioxidantes hidro e lipossolúveis ao diluidor de refrigeração do sêmen equino–revisão de literatura. Revista Electrônica de Veterinaria, v.17, n.11, p.1–28, 2016.

SANTOLARIA, P.; VICENTE-FIEL, S.; PALACÍN, I.; FANTOVA, E.; BLASCO, M.E.; SILVESTRE, M.A.; YÁNIZ, J.L. Predictive capacity of sperm quality parameters and sperm subpopulations on field fertility after artificial insemination in sheep. Animal Reproduction Science, v.163, n.1, p.82–88, 2015.

SILVA, A.R.; MORATO, R.G.; SILVA, L.D.M. The potential for gamete recovery from non-domestic canids and felids. Animal Reproduction Science, v.81, n.1/2, p.159-175, 2004.

SILVA, T.F.P.; DIAS, C.G.A.; ACKERMANN, C.L.; PINHEIRO, F.T.S.; BRAGA, A.C.P.; SILVA, L.D.M. Avaliação de segurança e analgesia de protocolos anestésicos para eletroejaculação em gatos domésticos (Felis catus). Ciência Animal Brasileira, v.12, n.3, p.497–505, 2011.

SOUZA, A.K.; TRAUTWEIN, L.G.C.; PARANZINI, C.S.; PERENCIN, F.M.; CARDOSO, G.S.; MARTINS, M.I.M. Influence of cooling temperature in sperm subpopulations of domestic cats. Animal Reproduction Science, v.189, n.2, p.1–10, 2018.

TAJIMA, H.; YOSHIZAWA, M.; SASAKI, S.; YAMAMOTO, F.; NARUSHIMA, E.; TSUTSUI, T.Intrauterine insemination with fresh semen in Amur leopard cat (Prionailurus bengalensis eutilura) during non-breeding season. Journal Veterinary Medical Science, v.79, n.1, p.92-99, 2017.

TEBET, J.M.; MARTINS, M.I.M.; CHIRINEA, V.H.; SOUZA, F.F.; CAMPAGNOL, D.; LOPES, M.D. Cryopreservation effects on domestic cat epididymal versus electroejaculated spermatozoa, Theriogenology, v.66, n.6/7, p.1629-1632, 2006.

THARASANIT, T.; TIPTANAVATTANA, N.; ORAVETDILOK, K.; TUANGSINTANAKUL, T.; SIRITHANYAKUL, P.; TANVETTHAYANONT, P. Optimal concentration of Rho-associated coiled-coil kinase (ROCK) inhibitor improved sperm membrane functionality and fertilizing ability of cryopreserved-thawed feline sperm. Theriogenology, v.144, n.1, p.27–32, 2020.

THUWANUT, P.; CHATDARONG, K.; JOHANNISSON, A.; BERGQVIST, A.S.; SÖDERQUIST, L.; AXNÉR, E. Cryopreservation of epididymal cat spermatozoa: effects of in vitro antioxidative enzymes supplementation and lipid peroxidation induction. Theriogenology, v.73, n.8, p.1076–1087, 2010.

THUWANUT, P.; ARYA, N.; COMIZZOLI, P.; CHATDARONG, K. Effect of extracellular adenosine 5’-triphosphate on cryopreserved epididymal cat sperm intracellular ATP concentration, sperm quality, and in vitro fertilizing ability. Theriogenology, v.84, n.5, p.702–709, 2015.

TSUTSUI, T.; WADA, M.; ANZAI, M.; HORI, T. Artificial insemination with frozen epididymal sperm in cats. Journal of Veterinary Medical Science, v.65, n.3, p.397–399, 2003.

VÁZQUEZ, A.J.F.; CEDILLO, M.J.; QUEZADA, V.J.; RIVAS, A.C.; MORALES, E.C.L.; AYALA, E.M.E.; HERNÁNDEZ, M.J.; GONZÁLEZ, R.A.; ARAGÓN, M.A. Effects of repeated electroejaculations on kinematic sperm subpopulations and quality markers of Mexican creole goats. Animal Reproduction Science, v.154, n.3, p.29–38, 2015.

VERSTEGEN, J.; IGUER-OUADA, M.; ONCLIN, K. Computer assisted semen analyzers in andrology research and veterinary practice. Theriogenology, v.57, n.1, p.149–179, 2002.

VICENTE-FIEL, S.; PALACÍN, I.; SANTOLARIA, P.; YÁNIZ, J.L. A comparative study of sperm morphometric subpopulations in cattle, goat, sheep and pigs using a computer-assisted fluorescence method (CASMA-F). Animal Reproduction Science, v.139, n.1/4, p.182–189, 2013.

VILLAVERDE, A.I.S.B.; MELO, C.M.; CORRENTE, J.E.; PAPA, F.O.; LOPES, M.D. Comparação Entre dois Métodos de coloração para análise morfológica e acrossomal de espermatozoides de gato doméstico (Felis Catus). Ciência Animal Brasileira, v.9, n.3, p.686–692, 2008.

VILLAVERDE, A.I.S.B.; FIORATTI, E.G.; PENITENTI, M.; IKOMA, M.R.V.; TSUNEMI, M.H.; PAPA, F.O.; LOPES, M.D. Cryoprotective effect of different glycerol concentrations on domestic cat spermatozoa. Theriogenology, v.80, n.7, p.730–737, 2013.

VILLAVERDE-MORCILLO, S.; ESTESO, M.C.; CASTAÑO, C.; TOLEDANO DÍAZ, A.; LÓPEZ-SEBASTIÁN, A.; CAMPO, J.L.; SANTIAGO-MORENO, J. Influence of Staining Method on the Values of Avian Sperm Head Morphometric Variables. Reproduction in Domestic Animals, v.50, n.5, p.750–755, 2015.

VIZUETE, G.; JIMÉNEZ, E.; AGÜERA, E.I.; PÉREZ-MARÍN, C.C. Impact of ultra-rapid freezing on the motility, morphology, viability and acrosome integrity of epididymal cat sperm diluted in sucrose-based extenders. Reproduction in Domestic Animals, v.49, n.1, p.5–8, 2014.

WILDT, D.E.; BUSH, M.; HOWARD, J.G.; O’BRIEN, S.J.; MELTZER, D.;VAN DYK, A.; EBEDES, H.; BRAND, D.J. Unique seminal quality in the South African cheetah and a comparative evaluation in the domestic cat. Biolology of Reproduction, v.29, n.4, p.1019–25, 1983.

ZAMBELLI, D.; CUNTO, M.; PRATI, F.; MERLO, B. Effects of ketamine or medetomidine administration on quality of electroejaculated sperm and on sperm flow in the domestic cat. Theriogenology, v.68, n.5, p.796–803, 2007.

ZAMBELLI, D.; PRATI, F.; CUNTO, M.; IACONO, E.; MERLO, B. Quality and in vitro fertilizing ability of cryopreserved cat spermatozoa obtained by urethral catheterization after medetomidine administration. Theriogenology, v.69, n.4, p.485–490, 2008.

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Publicado

2022-11-17

Como Citar

MARTINS, M. I. M. .; ALMEIDA, A. B. M. de . .; HIDALGO, M. M. T. . BIOTECNOLOGIAS NA PRESERVAÇÃO DE ESPERMATOZOIDES FELINOS. Ciência Animal, [S. l.], v. 32, n. 2, p. 85–100, 2022. Disponível em: https://revistas.uece.br/index.php/cienciaanimal/article/view/9477. Acesso em: 21 dez. 2024.

Edição

Seção

Artigos de Revisão